Влияние воды с пониженным содержанием дейтерия на организм бройлеров

Аннотация.

Установлено более активное потребление цыплятами воды с пониженным содержанием дейтерия, что активизировало их рост в течение первой декады. В дальнейшем эта вода обеспечивала также формирование нормативных показателей гомеостаза: морфобиохимических характеристик крови с активизацией гранулоцитопоэза, фагоцитоза и оптимизацию микробиоценоза кишечника. Использование питьевой воды с содержанием дейтерия 125 ррт позволило значительно увеличить устойчивость птицы к гипертермии.

Ключевые слова: цыплята-бройлеры, рост, гомеостаз, фагоцитоз, микробиоценоз кишечника.

Введение.

Молодняк мясных кроссов потребляет много воды, качество которой отражается на динамике роста, физиологических показателях, органах выделительной системы.

В литературе практически нет сведений о целесообразности использования воды с пониженным содержанием дейтерия при выращивании мясной птицы.

В работах Родимова Б.Н. установлено стимулирующее действие талой снеговой воды, в которой содержание дейтерия было на 25% ниже, чем в обычной питьевой, на яйценоскость кур, раннее половое созревание молодняка.

В опытах Синяк Ю.Е., Гурьевой Г.С, Гайдадымова В.Б., Тимакова А.А., Турусова В.С. и др. на японских перепелах, лабораторных животных показано, что использование воды с пониженным содержанием дейтерия повышает устойчивость животных к воздействиям различной природы.

Цель нашей работы заключалась в выявлении влияния питьевой воды с пониженным содержанием дейтерия на сохранность, динамику роста, показатели гомеостаза и устойчивость цыплят-бройлеров к тепловому стрессу. Оценивались морфометрические показатели желудочно-кишечного тракта, органов иммунной системы, морфологические и биохимические данные крови; уровень фагоцитоза, формирование микробиоценоза кишечника и выживаемость цыплят-бройлеров после теплового стресса.

Материалы и методы. Влияние питьевой воды с пониженным содержанием дейтерия изучали на цыплятах мясного кросса «Росс-308» с суточного возраста. Они содержались в условиях нерегулируемого микроклимата.

Для эксперимента были сформированы 3 группы цыплят по 30 голов: контрольная и две опытные.

Контрольную группу поили водопроводной водой: содержание дейтерия 1 45 ppm.

Первая группа получала лёгкую питьевую воду «Лангвей 1 25», содержащую 125 ppm дейтерия.

Второй давали лёгкую питьевую воду «Лангвей 60» с 60 ppm дейтерия. Показатели общей минерализации, содержание ионов кальция, магния, натрия, бикарбонатов, хлоридов, электропроводность водопроводной и лёгкой воды отличались незначительно.

Лёгкая питьевая вода «Лангвей» была произведена ООО «Айсберг» (г. Москва). Декларация о соответствии ТС № RUD-RU. АЮ 85. В. 09760 от 12.1 1.2015. Содержание дейтерия в воде определяли методом CRDS с помощью анализатора изотопного Picarro 1.2120-i.

Продолжительность выращивания птицы составила 35 дней. Режим кормления соответствовал зоотехническим нормам: в течение 25 дней цыплята получали комбикорма «старт», «рост», затем ПК-2.

У контрольных и опытных цыплят ежедневно учитывали объём потребляемой воды, сохранность, клиническое состояние. Ежедекадно их взвешивали, определяли живую массу.

В 35-дневном возрасте от цып-лят-аналагов каждой группы (приблизительно одинаковой живой массы) брали кровь — пункцией сердца.

Для характеристики морфобиохимических показателей гомеостаза у опытных и контрольных цыплят использовали сыворотку крови и цитрированную кровь.

Определяли количество эритро-цитов-0 0¹²/л), лейкоцитов-(10⁹⁾, подсчитывая в камере Горяева, гемоглобина (г/л) — визуальной колориметрией в гемометре ГС-3. СОЭ мм/ч определяли в эритро-седиометре Неводова, гематокрит (%) — центрифугированием, лейкоцитарную формулу— в мазках, окрашенных по Романовскому-Гимза.

В сыворотке крови спектрофотометрически была установлена концентрация общего белка, г/%. Количество мочевины (ммоль/л) определяли с помощью Ольвекс-диагностикума на спектрофотометре Unico.

В качестве значений физиологической нормы принимали интервалы соответствующих показателей, приведённых в литературе (Бессарабов Б.Ф. и др). Уровень фагоцитоза стабилизированной гепарином крови изучали в опсо-но-фагоцитарной реакции с пробиотическим штаммом кишечной палочки М-17, определяя фагоцитарный индекс и фагоцитарное число.

Морфометрические показатели железистого, мышечного желудков, 12-перстной, тонкой кишки, слепых кишок, прямой кишки оценивали по массе и длине кишечника. Измеряли массу фабри-циевой сумки,селезёнки.

Состояние индигенного толстокишечного микробиоценоза изучали посевом содержимого толстых кишок на элективные питательные среды.

Для выделения эшерихий делали посевы на среду Эндо, лактобацилл — на лактобакагар, культивирование вели в микроаэро-фильных условиях. Для выделения бифидобактерий использовали полужидкую кукурузно-лактозную среду (КЛС), энтерококков — сывороточно-теллури-товый агар. Подсчитывали коло-

Таблица 1. Схема опыта (30 гол.)

Таблица 2. Живая масса цыплят и расход воды

Примечание: * Р<0,001; Р<0,05 — по отношению к контролю.

Таблица 3. Морфобиохимические показатели крови опытных и контрольных цыплят (п=12)

Примечание: * Р<0,01; Р<0,05 — по отношению к контролю.

нии, количество микроорганизмов выражали в lgКОЕ/г.

Полученные результаты обрабатывали с использованием методов вариационного и статистического анализа для выявления статистически значимых различий по Плохинскому Н.А.

Результаты исследований. За период опыта в течение 35 дней сохранность цыплят контрольной и опытных групп составила 100 процентов. Динамика роста птицы опытных и контрольной групп представлена в таблице 2.

В ходе эксперимента цыплята-бройлеры более активно пили воду с пониженным содержанием дейтерия (60 ppm) Увеличение потребления такой воды по отношению к контролю составляло 41,6% в первую декаду и 8% в последние 5 дней. Цыплята первой группы потребили воды больше на 1 5,7-6,8 процента.

Самая высокая активность роста в опытных группах была отмечена в конце первой декады, живая масса цыплят оказалась на 11,25-1 1,75% выше, чем в контроле. Разница была статистически достоверной (Р<0,001)

В конце второй декады динамика роста опытных и контрольной групп была практически одинаковой, преимущество по живой массе второй группы на 3,3% не подтверждалось статистически.

Показатели живой массы цыплят за третью декаду свидетельствовали об активизации роста второй группы (живая масса 1 21 0 г), увеличение живой массы к контролю на 4,6% и разница подтверждались статистически (Р<0,05). За этот период отмечали незначительное увеличение на 0,95% живой массы первой группы (1 1 67 г).

В течение последних пяти дней наблюдали активный рост второй группы, живая масса 1386 г (Р<0,05), увеличение составило 4,96%, тогда как в первой группе не отмечали активизации роста, живая масса— 1303 грамма.

При изучении топографии органов желудочно-кишечного тракта у цыплят опытных и контрольной групп не обнаружено различий.

У цыплят первой группы масса 1 2-перстной кишки (1 2,6 г) и слепых кишок (12,4 г) превосходила контрольные показатели (Р<0,05, Р<0,01), что свидетельствовало об активной всасываемости питательных веществ и о значительном содержании микрофлоры в слепых кишках.

У цыплят второй группы масса центрального органа иммунной системы — сумки Фабрициуса (4,1 г) была статистически достоверно выше (Р<0,05) контрольных показателей, что доказывает положительное влияние питьевой воды с содержанием дейтерия 60 ppm на морфогенез иммунной системы.

Показатели массы железистого, мышечного желудков, селезёнки, прямой кишки у опытных и контрольных групп не имели достоверных отличий. Длина тонкого кишечника соответствовала норме и статистически значимых различий этого показателя в группах не обнаружено.

Таблица 4. Показатели фагоцитоза у опытных и контрольных цыплят (п=12)

Примечание: * Р<0,01; * Р<0,05 — по отношению к контролю.

Таблица 5. Микробиоценоз содержимого слепых кишок, (М) lg КОЕ/г, % выделения (С)

Примечание: * Р<0,001 — по отношению к контролю и первой группе.

Известно, что морфологические показатели крови являются ведущими для гомеостаза. Морфобиохимические характеристики крови цыплят опытных и контрольной групп представлены в таблице В.

Количество эритроцитов, гемоглобина, СОЭ у опытных и контрольных цыплят соответствовало нижним значениям физиологической нормы, статистически значимых различий не было. В то же время у цыплят первой группы показатель гематок-рита, свидетельствующий о повышенном содержании альбуминов, массы форменных элементов крови (на 1 1,6%) и общего белка (на 16,7%) был достоверно выше, чем в контрольной группе (Р<0,01 и Р<0,05). Уровень общего белка в сыворотке крови цыплят второй группы также превосходил контроль (на 16,7%), что подтверждалось статистически (Р<0,05).

Количественные показатели мочевины в сыворотке крови были низкими как в контрольной, так и в опытных группах, и статистически значимых отличий не обнаруживали.

Лейкограмма опытных и контрольных цыплят (процент содержания палочкоядерных, сегментоядерных псевдоэозинофилов, лимфоцитов, базофилов, моноцитов) соответствовала значениям физиологической нормы, исключением являлось повышенное количество метамиелоцитов (5,3-6,5 %) в крови цыплят опытных групп, свидетельствующее об активном гранулоцитопоэзе (Р<0,01). У опытных цыплят не установлена эозинофилия, подтверждающая сенсибилизацию организма к питьевой воде с пониженным содержанием дейтерия.

Фагоцитоз изучали в опсонофа-гоцитарной реакции, определяя фагоцитарный индекс (ФИ) и фагоцитарное число (ФЧ).

В контрольной группе поглощение эшерихий установлено у сегментоядерных псевдоэозинофилов, процент клеток, поглощающих эшерихии (ФИ), — 27,2, а количество поглощённых эшерихий одной клеткой (ФЧ) — 1,14.

В опытных группах эшерихий поглощали как сегментоядерные псевдоэозинофилы, так и метамиелоциты. ФИ в первой группе составил 41,6%, что превосходило контроль на 14,4% и подтверждалось статистически (Р<0,01). Во второй группе ФИ — 45,8%, что на 18,6% выше показателей цыплят контрольной группы, достоверно при Р<0,001. Метамиелоциты и псевдоэозинофилы опытных цыплят поглощали больше эшерихий, чем аналогичные клетки контрольных цыплят, превосходство поглотительной активности опытных групп подтверждалось высокой степенью статистической достоверности Р<0,001. Как известно (Тимаков А.А., Смирнов В.М., Гусаров Е.А.), фагоцитоз является главным механизмом естественной резистентности, а также обязательным звеном индукции и формирования специфического иммунного ответа. Полученные результаты свидетельствуют, что вода с пониженным содержанием дейтерия стимулировала неспецифическую резистентность цыплят.

Микрофлора толстого кишечника молодняка кур считается биогенным фактором, в значительной степени определяющим состояние организма, обеспечивающим процессы переваривания и всасывания, синтез витаминов, ферментов, аминокислот, оказывающим ингибирующее действие на патогенную микрофлору, активизирующим морфогенез иммунной системы (Бовкун Г.Ф., Филимонова Т.Ю. и др.).

В содержимом слепых кишок у всех обследуемых цыплят выделяли энтерококки, которые являются добавочным видом, а их плотность 5,19-5,76 lg КОЕ/г соответствовала концентрации у здоровых цыплят.

От 100% птицы выделяли эше-рихий, общее количество которых соответствовало нормативной концентрации 7,75-7,9 Ig КОЕ/г, однако в контрольной группе 50% колоний составляли лактозонегативные особи, не выполняющие синтетические, ферментативные, защитные функции, положение их в составе микробиоценоза характеризуют как добавочное или случайное.

Таким образом, микробиоценоз кишечника контрольных цыплят не был сформирован по компоненту полноценных эшерихий. Дефицит полноценных эшерихий отмечали в первой группе цыплят, содержимое их слепых кишок имело до 25% колоний лактозонегативных эшерихий. Микробиоценоз кишечника цыплят второй группы был сформирован по компоненту полноценных эшерихий при 100%-ном постоянстве их обитания.

Постоянное положение лактобацилл в нормативной концентрации 7,72-8,1 1 Ig КОЕ/г в составе микробиоценоза кишечника установлено у всей обследуемой птицы.

Микробиоценоз кишечника по компоненту бифидобактерий 9,1 5 Ig КОЕ/г при соответствии нормативной концентрации был установлен у цыплят второй группы. В первой группе при 100%-ном постоянстве обитания бифидобакте

рий их концентрация 8,47 Ig КОЕ/г была недостаточной. В контрольной группе показатель постоянства выделения бифидобактерий составлял 50% в концентрации 8,75 КОЕ/г.

Во многих птицехозяйствах возникают случаи перегрева (гипертермии) молодняка кур. Многочисленные исследования (Забуд-ский Ю.И., Голикова А.П., Федосеева И.А., Мельник В., Фиси-нин В.И., Кавтарашвили А.Ш.) показывают, что терморегуляция домашней птицы при гипертермии несовершенна. Она сопровождается изменениями адаптационных возможностей, в основе которых лежит нарушение оптимальных параметров кислотнощелочного гомеостаза, ферментативной активности и всех физиологических процессов.

Тяжесть проявления теплового стресса у птицы и резистентность к нему зависит от внешних (состав рациона, вода, условия содержания, параметры микроклимата) и внутренних (возраст, физиологическое состояние) факторов. Для снятия синдрома гипертермии и нормализации кислотно-основного состояния (КОС) используют обычно средства прямого нормализующего воздействия, добавляя в корм или выпаивая бикарбонат натрия, хлорид аммония, содержащие бетаин (Мельник В).

Для оценки влияния питьевой воды с пониженным содержанием дейтерия на устойчивость цыплят к тепловому стрессу был проведён эксперимент с искусственной гипертермией цыплят, результаты которого представлены в таблице 6. Гипертермия была вызвана содержанием 10-дневных цыплят в течение 5 ч при температуре 39° С. После гипертермии цыплят охлаждали и предоставляли неограниченный доступ к воде.

Несмотря на возвращение цыплят контрольной группы в термонейтральные условиия, неограниченный доступ к воде, все они погибли в течение 3 дней. На вскрытии была идентичная пато-лого-анатомическая картина, соответствующая метаболическому ацидозу: отмечали асцит, нефрит, застойную гиперемию печени.

Цыплята первой опытной группы, получавшие воду с содержанием дейтерия 125 ppm до и после гипертермии, выжили, но в дальнейшем снизили интенсивность роста.

Так, в 20-дневном возрасте их масса составляла 474,4 г, что было на 56,6 г меньше среднего показателя по группе, подтверждалась статистически (Р<0,001).

В конце опыта их масса составлял а 1011 г — на292 гменьше среднего показателя по группе, подтверждалась статистически (Р<0,001). Полученные результаты свидетельствуют о неполном восстановлении организма, что также отмечено в опытах Gonzalez-Esquerra R., и Leeson S. Полное восстановление ферментативной и пищеварительной активности птицы возможно только после предварительной акклиматизации.

Заключение. Цыплята-бройлеры кросса «Росс-308» отдавали предпочтение питьевой воде с содержанием дейтерия 60 ppm, объёмы потребления были выше контрольных в первую декаду жизни на 41,6%, во вторую — на 19,8%, в третью — на 24,2 процента. Выпаивание такой воды обеспечивало лучший рост цыплят в течение первой и третьей декад. Увеличение живой массы к контролю в первую декаду 1 1,25%, в третью — 4,6%, в дальнейшем — 4,96 процента.

Выпаивание воды с содержанием дейтерия 1 25 ppm способствовало лучшему росту цыплят только в течение первой декады на 11,75 процента.

Применение питьевой воды с пониженным содержанием дейтерия обеспечивало нормативные морфобиохимические показатели гомеостаза цыплят-бройлеров, стимулировало гранулоцитопоэз, повышало количество общего белка в крови, активизировало фагоцитоз.

Микробиоценоз кишечника цыплят к 35 дню жизни, получавших воду с содержанием дейтерия 60 ppm, был сформирован по компоненту эшерихий, лактобацилл и бифидобактерий в нормативной концентрации, а получавших воду с содержанием дейтерия 125 ppm, только по компоненту лактобацилл при дефиците полноценных эшерихий и бифидобактерий при постоянном их обитании.

Использование питьевой воды с содержанием дейтерия 125 ppm при выращивании цыплят позволило увеличить их устойчивость к гипертермии и обеспечить 100%-ную сохранность.

Литература:

1.    Динамика формирования микробиоценоза кишечника у молодняка кур / Г.Ф. Бовкун [и др.]. // Птицеводство. 2017. № 2. С. 35-36.

2.    Забудский Ю.И., Голикова А.П., Федосеева Н.А. Повышение толерантности сельскохозяйственной птицы с помощью термотренинга в перенатальный период онтогенеза // Сельскохозяйственная биология. 201 2. № 4. С. 14-21.

3.    Клинические и лабораторныве методы исследования сельскохозяйственной птицы при незаразных болезнях / Б.Ф. Бессарабов [ и др.] М:. ЗооВетКнига. 201 5. 310 с.

4.    Мельник Б. Защищаем птицу от теплового стресса // Животноводство России. 2014. № 1. С. 23-26.

5.    Плохинский Н.А. Биометрия / Новосибирск. 1 961. 362 с.

6.    Родимов Б.Н. Снеговая вода - стимулятор роста и продуктивности животных и растений // Сельское хозяйство Сибири. 1961. № 76. С. 66-69.

7.    Родимов Б.Н., Маршунина А.М., Яфа-рова И.О. Действие снеговой воды на живые организмы // Сельское хозяйство Сибири и Дального Востока. 1965. № 4. С. 56-57.

8.    Синяк Ю.С., Гурьева Т.С., Гайдады-мов В.Б. Методы получения бездейте-риевой воды и исследование ее влияния на физиологический статус японского перепела. / Космическая биология и авиакосмическая медицина. Материалы науч.-практ. конф. Киев. 2004. С. 97.

9.    Тимаков А.А. Основные эффекты лёгкой воды. VIII Всерос. конф. Физико-химические процессы при селекции атомов и молекул. М. 2003. С. 10-14.

10.    Тимаков А.А., Смирнов В.М., Гусаров Е.А. Повышение иммунитета естественным путём. М:. Наука. 2003. 51 с.

11.    Турусов В.С. и др. Изучение радио-протекторного действия воды с пониженным содержанием дейтерия при однократном воздействии высоких доз радиации // Рос. биотерапевтический журнал. 2003. Т. 4. № 1. С.92.

12.    Фисинин В.И., Кавтарашвили А.Ш. Тепловой стресс у птицы. Опасность, физиологические изменения в организме, признаки проявления // Сельскохозяйственная биология. 2015. Т. 50. № 2. С. 162-171.

1 3. Research concerning the radioprotective and immunostimulating effects of deuterium-depleted water / Bild W. [et al], Rom.J Physiol. 1999. Vol 36.N 3-4. P. 205-218.

14. Cozalez-Esquerra R., Leeson S Physiological and metabolic responses of broilers to heat stress-implications for protrin and amino acid nutrition. World s Poult. Sci. J.,2006. 62. P. 282-295.

Для контакта с авторами:

Тимаков Александр Алексеевич тел.: 8 (920) 834-86-34 Бовкун Галина Фёдоровна тел.: 8 (910) 232 66 42 Кротов Дмитрий Геннадьевич тел.: 8 (961) 105-56 62

Птицеводство • №08 • 2017